Métodos de proteção

- Em processo de cultivo

Nenhum método de controle é realmente eficaz durante o cultivo do tomate.

Se ocorrerem ataques no viveiro, as plantas afetadas devem ser eliminadas. Caso contrário, plantá-los no campo ajudará a garantir a disseminação de nematóides e a contaminação de solos saudáveis.

Durante o cultivo, para compensar a disfunção parcial dos sistemas radiculares parasitados por numerosas galhas, pode-se fazer uma amontoa das plantas. Isso promoverá o desenvolvimento de raízes adventícias que assumirão o controle temporariamente.

As bacias serão realizadas nos períodos mais quentes do dia, a fim de prevenir ou mesmo reduzir o murchamento.

Em campo aberto, é imperativo que os sistemas radiculares das plantas atacadas sejam removidos da parcela e destruídos para evitar o enriquecimento do solo com nematóides. Se esta última medida não for possível, as raízes serão colocadas ao ar livre para que sofram os efeitos do sol. Da mesma forma, várias lavouras sucessivas realizadas durante o verão contribuirão para expor os nematóides ao calor e matá-los.

Deve-se notar que a compostagem , que permite eliminar as pragas aéreas presentes nos frutos, folhas e caules, não é tão eficaz nas raízes. De fato, este método não elimina completamente os nematóides presentes neste último.


- Próxima safra

Para ser eficaz, o combate aos nematóides das galhas deve envolver, de forma complementar, todos os métodos de controle propostos anteriormente e posteriormente. Uma análise nematológica será realizada antes da próxima safra para avaliar os níveis de populações de solo e assim poder escolher, com pleno conhecimento de causa, medidas proporcionais aos riscos incorridos.

Sendo os nemátodes bioagressores telúricos, as várias medidas recomendadas para o seu controlo terão como objetivo limitar, ou mesmo reduzir, os níveis populacionais do solo.

Assim, rotações de culturas e certas culturas de cobertura são freqüentemente recomendadas para retardar o aparecimento de nematóides ou controlar os níveis populacionais no solo. As rotações nem sempre são fáceis de implementar, em particular para certos nematóides polífagos como Meloidogyne spp. ou Pratylenchus spp. De fato, nem sempre é fácil encontrar plantas não hospedeiras que possam entrar em rotações. Para serem eficazes, devem durar pelo menos quatro anos. Várias plantas cultivadas ou de cobertura são relatadas como, em graus variados, menos favoráveis ​​ao desenvolvimento de Meloidogyne spp. : soja, cebola, alho, milho, cereais de inverno, amendoim, rúcula, Paspalum notatum, Cynodon dactylon, Eragrostis curvula, Chloris gayana, Digitaria decumbens, Panicum maximum, Crotalaria spp., Mucuna pruriens , gergelim, genótipos resistentes aos nematóides Vigna unguiculata … Na Martinica, rotações curtas com a leguminosa forrageira Mucuna pruriens reduziu os níveis das populações de M. incognita e Rotylenchulus reniformis no solo. O pousio às vezes é recomendado, mas apresenta problemas de erosão. Neste caso, será necessário trabalhar o solo superficialmente várias vezes durante o ano.

Às vezes, os nematóides são controlados pela imersão de parcelas futuras que já estão contaminadas por 7 a 9 meses. Essa imersão pode ser contínua ou intercalada com períodos de secagem do solo. Nestas condições, este esgota-se em oxigénio e acumula substâncias tóxicas para os nemátodos, como ácidos orgânicos, metano, etc. nematóides ao mesmo tempo. As ervas daninhas serão destruídas gradualmente trabalhando o solo superficialmente em intervalos regulares.

Vários arados , plantio precoce e em montes são às vezes recomendados para limitar os efeitos dos nematóides. O mesmo vale para o uso de grandes torrões para fazer as plantas; em particular, permitem retardar as infestações. Deve-se notar que as ferramentas utilizadas para trabalhar o solo em parcelas contaminadas devem ser cuidadosamente limpas antes de serem usadas em parcelas saudáveis. Será o mesmo para as rodas dos tratores. O enxágue cuidadoso deste material com água geralmente é suficiente para livrá-lo do solo e nematóides que o contaminam.

O enterramento no solo de certos compostos ou adubos verdes pouco antes de iniciar uma cultura de tomate também pode contribuir para limitar os danos dos nematóides. Como exemplo, o composto feito de polpa de café reduz o número de galhas e as massas de ovos de M. incognita . O mesmo se aplica aos bolos à base de Azadirachta indica, Chrysanthemum coronarium, Ricinus communis, Sorghum sudanense , centeio e aveia. A adição de matéria orgânica ao solo (compostos, estrume) aumenta a sua capacidade hídrica, o que favoreceria a entrada de certos microrganismos em competição com os nemátodos.

Deve-se notar que a adição de quitina ao solo parece ter alguma eficácia contra M. hapla .

Além disso, as ervas daninhas devem ser perfeitamente controladas em parcelas futuras porque um certo número delas é susceptível de abrigar e multiplicar nematóides. Será necessário controlar perfeitamente a fertilização das plantas, bem como a sua irrigação.

Será essencial obter plantas saudáveis . Serão preferencialmente produzidos em prateleiras e em substrato desinfetado. Eles podem ser colocados no chão, desde que este seja coberto com uma cobertura plástica limpa e não rasgado. Se você tiver dúvidas sobre a qualidade do solo do seu viveiro, precisará desinfetá-lo. Em áreas de produção extensa, os viveiros não serão instalados em parcelas que tenham abrigado plantas suscetíveis.

Vários produtos nematicidas* foram e ainda são usados ​​para destruir nematoides em solos. A sua escolha dependerá da legislação sobre pesticidas em vigor no seu país e dos meios financeiros de que disponha para realizar esta desinfecção. A utilização destes produtos apresenta várias desvantagens: muitos deles são tóxicos para o homem e para o ambiente, são pouco específicos ou nada específicos e perturbam o equilíbrio biológico do solo, são dispendiosos e por vezes requerem equipamentos específicos. Em alguns países, são utilizados como último recurso, quando os outros métodos propostos já não são suficientes para limitar eficazmente os danos causados ​​pelos nematóides.

Em países onde há muito sol, pode-se prever a desinfecção do solo por solarização , em particular para limpar as parcelas a um custo menor. Essa técnica consiste em cobrir o solo a ser desinfetado, previamente bem preparado e bem umedecido, com filme de polietileno de 35 a 50 µm de espessura. Este último será mantido no local por 4 a 8 semanas durante um período muito ensolarado do ano. Aumenta a temperatura do solo e promove a atividade de antagonismos microbianos. Isso contribui para reduzir o nível de inóculo no solo de muitos microrganismos fitopatogênicos e, em particular, de certos nematóides. Muitos deles são eliminados em temperaturas entre 44 e 48°C. O uso de nematicidas e compostos às vezes é combinado com solarização para aumentar sua eficácia, especialmente em Meloidogyne spp.

Seja qual for o método utilizado para desinfetar o solo, muitas vezes é recomendável implementá-lo após a colheita, pois muitos nematóides ainda estão presentes nos horizontes superficiais. Além disso, não será desejável trabalhar o solo muito profundamente após a desinfecção, sob o risco de trazer solo não desinfetado.

resistentes Variedades estão atualmente disponíveis. Resistência a Meloidogyne spp. vem da espécie selvagem Lycopersicon peruvianum . É conferido por um único gene dominante chamado " Mi " (agora denominado " Mi-1 ") e resulta em uma reação de hipersensibilidade celular no local de penetração do nematóide: as larvas não conseguem mais se prender à raiz e completar seu ciclo. Este gene, localizado no cromossoma 6, permite controlar 3 das espécies mais frequentes: M. incognita, M. arenaria e M. javanica . Infelizmente, essa resistência não é efetiva contra M. hapla , que no entanto vê sua taxa de reprodução reduzida em plantas que possuem o Mi gene “ ”. Nem é em relação a M. mayaguensis .

Biótipos virulentos em relação ao gene " Mi " das 3 espécies envolvidas na resistência foram descritos em muitas regiões produtoras: Califórnia, Japão, Marrocos, Espanha, Grécia, França, etc.). Deve-se notar que essas populações virulentas às vezes são separadas em dois grupos:
– populações virulentas selecionadas, de parcelas onde variedades resistentes foram cultivadas em diversas ocasiões. A virulência seria adquirida de forma gradual e estável; envolveria vários genes nesses nematóides;
– populações virulentas naturais (denominadas “raças B”), não confrontadas recentemente com variedades resistentes.

Tem sido sugerido que o mecanismo genético da virulência das primeiras populações seria idêntico nas 3 espécies de Meloidogyne , mas diferente das populações virulentas naturais.

A título de exemplo, refira-se que raças capazes de contornar o gene " Mi " foram demonstradas em vários países da Europa e da Bacia do Mediterrâneo: em M. javanica em Espanha, Grécia, Creta, Chipre, em Marrocos, Tunísia, etc., e em M. incognita na França, Grécia…. Deve-se notar também que raças B de M. incognita foram descritas na Costa do Marfim e de M. arenaria no Senegal.

Apesar disso, o gene " Mi " , utilizado há mais de cinquenta anos, ainda é eficaz em muitos contextos agronômicos. Observe que a reprodução de M. incognita em genótipos possuindo “ Mi ” no estado heterozigoto seria maior do que em genótipos possuindo este gene no estado homozigoto; isso pode ter consequências para a durabilidade da resistência conferida por esse gene. Além disso, diferentes níveis de eficácia foram ocasionalmente relatados entre pais resistentes e seus híbridos, provavelmente devido à transferência incompleta do gene " Mi " durante o cruzamento. Finalmente, acrescentemos que esta resistência também pode ser superada na presença de altas temperaturas, da ordem de 28° C. e mais.

Essas diferentes descobertas sugerem pelo menos dois conselhos:
– evitar cultivar uma variedade resistente ou um porta-enxerto no mesmo terreno durante vários anos porque existe o risco de adaptação destes nemátodos;
– caso se observe uma perda de eficácia da resistência aos nemátodos, será necessário fazer um balanço com o seu técnico para saber se se trata de uma estirpe capaz de contornar esta resistência, com uma espécie como a M. hapla não abrangida por o último ou a reduções de eficiência ligadas, por exemplo, a altas temperaturas.

O surgimento de cepas virulentas e os limites da resistência conferida por “ Mi ” a altas temperaturas têm justificado a procura de outras resistências aos nematóides das galhas. Assim, 7 genes de resistência a Meloidogyne spp., designados “ Mi-2 ” a “ Mi-8 ”, foram identificados em acessos de Lycopersicon peruvianum e um em L. chilense . Conferem resistências diferentes das conferidas pelo Mi gene “ ”. Alguns são eficazes contra M. hapla e/ou ainda são funcionais a 33°C. Assim, " Mi-2 " e " Mi-6 " conferem resistência a M. incognita a 32°C, " Mi-3 " a isolados virulentos desta última espécie, " Mi-4 " e " Mi-5 " a M incognita e M. javanica a 32°C, “ Mi-7 ” a isolados virulentos de M. incognita a 25°C como “ Mi-8 ”. A resistência ao calor estável M. hapla foi observada tanto em um acesso de L. peruvianum , como também em L. chilense .

Sendo o cruzamento entre L. esculentum e L. peruvianum difícil, o futuro desses genes permanece incerto.

Além disso, existe um certo número de plantas que capturam nematóides e nematicidas, como Tagetes spp. ( T. erecta, T. patula …) que são todos os mesmos hospedeiros em particular de M. hapla . Estas plantas ainda são pouco utilizadas no contexto das rotações com tomate.

Um certo número de microrganismos predadores, parasitários e nematicidas de nematóides das galhas foi testado em várias plantas: fungos como Arthrobotrys irregularis, A. dactyloides, A. conoides, Glomus fasciculatum, Hirsutella minnesotensis, Paecilomyces marquandii ou P. lilacinus , mas também bactérias como Bacillus penetrans, B. thuringiensis ou mesmo Streptomyces da Costa Rica … Por exemplo, Verticillium chlamydosporium infecta o segundo estágio larval e os ovos de M. hapla .

Finalmente, vários extratos de plantas (folhas ou raízes) prejudicariam o desenvolvimento de nematoides das galhas em particular: Azadirachta indica, Chromolaena odorata, Deris elliptica, Euphorbia antiquorum, Inula viscosa, Peganum harmala, Ruta graveolens, Senecio cineraria, Swietenia mahagoni, etc. .