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Biologia, epidemiologia

 

  • Conservação, reservatórios de fitoplasma 

Os fitoplasmas responsáveis ​​pelos amarelos da margarida-rainha, estolbur, etc., são organismos bastante polífagos que podem se multiplicar em diferentes hospedeiros cultivados e em ervas daninhas , sendo estas últimas importantes reservatórios. A gama de hospedeiros parece variar de um fitoplasma para outro.

afetam As margaridas amarelas mais de 350 espécies diferentes de plantas , cultivadas ou não, distribuídas em cerca de cinquenta gêneros botânicos. Várias ervas daninhas e plantas silvestres podem abrigar fitoplasmas: trevo, Salsola tragus , várias espécies de Plantago e Sonchus (incluindo S. asper ), Taraxacum officinale , alface selvagem, Senecio cruentus, Argyranthenium frutescens, Spartium junceum … Alguns também são relatados em batata, berinjela , pimenta, milho, Ipomoea obscura, salada, cenoura, espinafre, aipo, abobrinha, couve de Bruxelas, cebola, fava, dália, Hydrangea macrophylla, Lavandula officinalis , oliveira, Primula sp., Viola odorata

da batata Os fitoplasmas do grupo stolbur infectam mais de 45 espécies entre as solanáceas e pelo menos 16 espécies pertencentes a outras 6 famílias botânicas. Eles se multiplicam nessas plantas que às vezes servem como fontes de inóculo. Entre as plantas cultivadas, retemos a pimenta, a beringela, a batata, o aipo, a cenoura, o medronheiro, a videira, o tabaco, a alfazema, o abacate…. As ervas daninhas incluem trepadeira ( Convolvulus arvensis e Calystegia sepium , ver foto 881), erva-moura (foto 882), urtiga ( Urtica dioica ), trevo ... Trepadeira e urtiga parecem desempenhar um papel crucial no ciclo epidemiológico do stolbur como hospedeiros preferidos de um dos os potenciais insetos vetores, influenciando fortemente as epidemias de stolbur.

Muitos outros hospedeiros têm sido suspeitos em vários países de serem potenciais reservatórios de fitoplasmas ou hospedeiros “sem saída” (sem conhecer precisamente o seu grupo) no contexto de epidemias de fitoplasmose em tomateiro: cenoura, pimenta, escarola, morango, abacate, pêra… (em Espanha), Artemisia absinthium, Cirsium arvense, Cichorium intybus, Convolvulus arvensis, Taraxacum officinale … ​​(na Rússia), pimenta, tomate, tabaco, cenoura, salsa, aipo, videira, nabo, Datura stramonium, Taraxacum offinale, Silene vulgaris ( na Hungria), berinjela, pimenta, Cryptotaenia japonica, Chrysanthemum coronarium, Gentiana sp.… (no Japão). Seremos especialmente cautelosos com trepadeiras e urtigas.

Esses fitoplasmas também persistem em seus vetores , várias espécies de cigarrinhas. O ciclo desses insetos envolve ovos que não desempenham nenhum papel na conservação do fitoplasma no inverno, mas garantem a sobrevivência do inseto de uma estação para outra.

  • transmissão, divulgação

Como mencionamos anteriormente, esses fitoplasmas são transmitidos por várias espécies de cigarrinhas de modo persistente , durante picadas alimentares. Quanto aos hospedeiros desses fitoplasmas, o número de espécies de cigarrinhas vetoras é grande e varia de acordo com os fitoplasmas.

" Candidatus Phytoplasma asteris" : 30 espécies de cigarrinhas incluindo Macrosteles spp., Euscelis spp., Scaphytopius spp., Aphrodes spp., Orosius argentatus, Euscelidius variegatus ...

Candidatus Phytoplasma solani” (figura 1): Hyalesthes obsoletus Signoret (foto 880) seria o vetor mais importante na europa. Esta cigarrinha da família Cixiidae é uma espécie polífaga vetora do fitoplasma stolbur do grupo 16SrXII-A, também presente em Convolvulus arvensis, Urtica spp., Ranunculus spp., Senecio spp. e Artemisia spp., mais raramente em fruteiras lenhosas e em vinhas… Imagos estão activos de Maio a meados de Agosto, com uma geração por ano e hibernam na forma larval.

da Outros insetos mesma família foram relatados como vetores: Hyalesthes mlokosiewiczi, Pentastiridius leporinus

Cigarrinhas disseminam , insetos sugadores, fitoplasmas por longas distâncias durante sua migração e contaminam plantas de tomate no final da primavera e durante o verão (final de junho, durante julho na França). Uma vez em contato com a folha, perfuram os vasos do floema para se alimentar, injetando ou captando fitoplasmas à medida que passam. O(s) fitoplasma(s), uma vez no inseto, multiplicam-se nas células da parede do intestino e a atravessam. Eles então atingem a hemolinfa e de lá atingem vários órgãos, inclusive as glândulas salivares, que tornam as cigarrinhas infecciosas. Macrosteles quadrilineatus pode permanecer assim por pelo menos cem dias.

Esses insetos são geralmente ocasionais em plantas infectadas. Eles são capazes de voar longas distâncias ou permanecer no lugar. A data de início dos sintomas, que geralmente ocorre 30-45 dias após a contaminação, depende do período de migração do(s) vetor(es). A migração é um fenômeno complexo que consiste na transferência de populações de insetos de um lugar para outro na forma de voos em massa. As causas, pouco conhecidas, parecem estar ligadas a condições locais desfavoráveis ​​às cigarrinhas. Entre os fatores que influenciam a migração e a natureza dos voos, podemos citar a fome, superlotação, deterioração do hospedeiro, fotoperíodo, deficiência endócrina do inseto ou efeitos genéticos, temperatura, vento, etc. seca, eles mudarão mais facilmente de plantas silvestres para culturas irrigadas. Verões quentes e secos estimulam a migração de certos vetores. Fenômenos de palatabilidade às vezes são observados, mas não são bem conhecidos. Os invernos frios ajudam a reduzir as populações de hibernação.

Esses fitoplasmas são transmissíveis por enxertia . Diferentes espécies de dodder ( Cuscuta campestris, C. epilinum, C. trifolii, etc.), plantas parasitas que afetam particularmente o tomate (ver página ), são capazes de transmitir fitoplasmas e, em particular, os responsáveis ​​pelo estolbur. Observe que fitoplasmas foram encontrados em colzas ( Orobanche aegyptiaca ) parasitando raízes de tomate, sugerindo que eles poderiam contribuir para sua transmissão. Eles não parecem ser transmissíveis por sementes em Solanaceae. Nem seriam por batatas de semente.

Last change : 12/08/22
  • Author :
  • D Blancard (INRAe)
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